PCR定義
PCR（Polymerase Chain Reaction）即聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)，是指在DNA聚合酶催化下，以母鏈DNA為模板，以特定引物為延伸起點(diǎn)，通過變性、退火、延伸等步驟，體外復(fù)制出與母鏈模板DNA互補(bǔ)的子鏈DNA的過程。是一項(xiàng)DNA體外合成放大技術(shù)，能快速特異地在體外擴(kuò)增任何目的DNA。可用于基因分離克隆，序列分析，基因表達(dá)調(diào)控，基因多態(tài)性研究等許多方面。

PCR技術(shù)的基本原理
一.PCR反應(yīng)成分：
1.模板DNA；2.引物；3.四種脫氧核糖核苷酸；
4.DNA聚合酶；5.反應(yīng)緩沖液、Mg2 等。
二.PCR反應(yīng)基本步驟：
1.變性：高溫使雙鏈DNA解離形成單鏈（94℃，30s）。
2.退火：低溫下，引物與模板DNA互補(bǔ)區(qū)結(jié)合（55℃，30s）。
3.延伸：中溫延伸。DNA聚合酶催化以引物為起始點(diǎn)的DNA鏈延伸反應(yīng)（70～72℃，30～60s）

1.變性(denaturation)：通過加熱使模板DNA的雙鏈之間的氫鍵斷裂，雙鏈分開而成單鏈的過程。
2.退火(annealling)：當(dāng)溫度降低時(shí)，引物與模板DNA中互補(bǔ)區(qū)域結(jié)合成雜交分子。
3.延伸(extension)：在DNA聚合酶、dNTPs、 Mg² 存在下，DNA聚合酶催化引物按5’→3’方向延伸，合成出與模板DNA鏈互補(bǔ)的DNA子鏈。
以上述三個(gè)步驟為一個(gè)循環(huán)，每一循環(huán)的產(chǎn)物均可作為下一個(gè)循環(huán)的模板，經(jīng)過n次循環(huán)后，目的DNA以2ⁿ的形式增加。

•PCR擴(kuò)增的基本方法

•PCR反應(yīng)的成分和作用
總體積：一般為25μl～100 μl
（一）無Mg² buffer：由純水、kcl、Tris組成。Tris用于調(diào)節(jié)反應(yīng)體系pH值，使Taq酶在偏堿性環(huán)境中反揮活性。kcl可降低退火溫度，但不能超過50 mmol/L，否則會(huì)抑制DNA聚合酶活性。
（二）Mg² :終濃度為1.5～2.0mmol/L，其對應(yīng)dNTP為200 μmol/L，注意Mg² 與dNTPs之間的濃度關(guān)系，由于dNTP與Taq酶竟?fàn)嶮g² ，當(dāng)dNTP濃度達(dá)到1 mmol/L時(shí)會(huì)抑制Taq酶的活性。 Mg² 能影響反應(yīng)的特異性和產(chǎn)率。
（三）BSA：一般用乙酰化的BSA，起著減少PCR管對Taq酶的吸附作用，對Taq酶有保護(hù)作用。
（四）底物（dNTPs）：dNTPs具有較強(qiáng)酸性，其儲(chǔ)存液用NaOH調(diào)pH值至7.0～7.5，一般存儲(chǔ)濃度為 10 mmol/L，各成份以等當(dāng)量配制，反應(yīng)終濃度為20～200μmol/L。高濃度可加速反應(yīng)，但同時(shí)增加錯(cuò)誤摻入和實(shí)驗(yàn)成本；低濃度可提高精確性，而反應(yīng)速度會(huì)降低。
（五）Taq酶：能耐95℃高溫而不失活，其最適pH值為8.3～8.5，最適溫度為75～80℃，一般用72℃。能催化以DNA單鏈為模板，以堿基互補(bǔ)原則為基礎(chǔ)，按5’→3’方向逐個(gè)將dNTP分子連接到引物的3’端，合成一條與模板DNA互補(bǔ)的新的DNA子鏈。無3’→5’的外切酶活性，沒有校正功能。某種dNTP或Mg2 濃度過高,會(huì)增加其錯(cuò)配率。用量一般為0.5～5個(gè)單位/100μl。
（六）模板：PCR對模板DNA的純度不要求很高，但應(yīng)盡量不含有對PCR反應(yīng)有抑制作用的雜質(zhì)存在，如蛋白酶、核酸酶、TqaDNA聚合酶抑制劑、能與DNA結(jié)合的蛋白質(zhì)。
模板DNA的量不能太高，否則擴(kuò)增可能不會(huì)成功，在此情況下可適當(dāng)稀釋模板。
（七）引物：引物濃度一般為0.1～0.5μmol/L，濃度過高會(huì)引起錯(cuò)配和非特異擴(kuò)增，濃度過低則得不到產(chǎn)物或產(chǎn)量過低。引物長度一般15～30個(gè)堿基，引物過長或過短都會(huì)降低特異性。其3’末端一定要與模板DNA配對，末位堿基最好選用A、C、G（因T錯(cuò)配也能引發(fā)鏈的延伸）。
引物G C約占45～55%，堿基應(yīng)盡量隨機(jī)分布，避免嘧啶或嘌呤堆積，兩引物之間不應(yīng)有互補(bǔ)鏈存在，不能與非目的擴(kuò)增區(qū)有同源性。

•PCR反應(yīng)條件的選擇（影響因素）
•溫度參數(shù)：
1.變性：模板變性完全與否是PCR成功的關(guān)鍵，一般先于94℃（或95℃）變性3～10min，接著94℃變性30～60s。
2.退火：退火溫度一般低于引物本身變性溫度5℃。引物長度在15～25bp可通過公Tm=(G C)×4℃ (A T)×2℃計(jì)算退火溫度，一般退火溫度在40～60℃之間，時(shí)間為30～45s。如果(G C)低于50%，退火溫度應(yīng)低于55℃。較高的退火溫度可提高反應(yīng)的特異性。

3.延伸：延伸溫度應(yīng)在Taq酶的最適溫度范圍之內(nèi)，一般在70～75℃。延伸時(shí)間要根據(jù)DNA聚合酶的延伸速度和目的擴(kuò)增片段的長度確定，通常對于1kb以內(nèi)的片段1min是夠用的。
循環(huán)數(shù)：
PCR的循環(huán)數(shù)主要由模板DNA的量決定，一般20～30次循環(huán)數(shù)較合適，過多的循環(huán)數(shù)會(huì)增加非特異擴(kuò)增產(chǎn)物，具體要多少循環(huán)數(shù)可通過預(yù)試驗(yàn)確定。
PCR產(chǎn)物積累規(guī)律：
反應(yīng)初期產(chǎn)物以2ⁿ呈指數(shù)形式增加，至一定的循環(huán)數(shù)后，引物、模板、DNA聚合酶形成一種平衡，產(chǎn)物進(jìn)入一個(gè)緩慢增長時(shí)期（“停滯效應(yīng)”），即“平臺(tái)期”。到達(dá)平臺(tái)期所需PCR循環(huán)數(shù)與模板量、PCR擴(kuò)增效率、聚合酶種類、非特異產(chǎn)物竟?fàn)幱嘘P(guān)。 
 

PCR擴(kuò)增儀